Législation communautaire en vigueur Document 384L0004 Actes modifiés: 378L0633 (Modification) 372L0199 (Modification) 371L0393 (Modification) 384L0004 Directive 84/4/CEE de la Commission du 20 décembre 1983 modifiant les directives 71/393/CEE, 72/199/CEE et 78/633/CEE portant fixation de méthodes d'analyse communautaires pour le contrôle officiel des aliments des animaux Journal officiel n° L 015 du 18/01/1984 p. 0028 - 0038 Edition spéciale espagnole .: Chapitre 3 Tome 29 p. 233 Edition spéciale portugaise : Chapitre 3 Tome 29 p. 233 Edition spéciale finnoise ...: Chapitre 3 Tome 17 p. 33 Edition spéciale suédoise ...: Chapitre 3 Tome 17 p. 33 Texte: ***** DIRECTIVE DE LA COMMISSION du 20 décembre 1983 modifiant les directives 71/393/CEE, 72/199/CEE et 78/633/CEE portant fixation de méthodes d'analyse communautaires pour le contrôle officiel des aliments des animaux (84/4/CEE) LA COMMISSION DES COMMUNAUTÉS EUROPÉENNES, vu le traité instituant la Communauté économique européenne, vu la directive 70/373/CEE du Conseil, du 20 juillet 1970, concernant l'introduction de modes de prélèvement d'échantillons et de méthodes d'analyse communautaires pour le contrôle officiel des aliments des animaux (1), modifiée en dernier lieu par l'acte d'adhésion de la Grèce, et notamment son article 2, considérant que les directives 71/393/CEE (2), 72/199/CEE (3) et 78/633/CEE (4) de la Commission fixent respectivement les méthodes de dosage des matières grasses brutes, de la virginiamycine et de la bacitracine-zinc; qu'il apparaît nécessaire de remplacer ces méthodes par des méthodes adaptées à l'évolution des connaissances scientifiques et techniques; considérant que les mesures prévues à la présente directive sont conformes à l'avis du comité permanent des aliments des animaux, A ARRÊTÉ LA PRÉSENTE DIRECTIVE: Article premier À l'annexe de la directive 71/393/CEE, le texte de la partie 4, « Dosage des matières grasses brutes », est remplacé par le texte figurant à l'annexe I de la présente directive. Article 2 À l'annexe II de la directive 72/199/CEE, le texte de la partie 5, « Dosage de la virginiamycine - par diffusion sur gélose », est remplacé par le texte figurant à l'annexe II de la présente directive. Article 3 À l'annexe de la directive 78/633/CEE, le texte de la partie 1, « Dosage de la bacitracine-zinc - par diffusion sur gélose », est remplacé par le texte figurant à l'annexe III de la présente directive. Article 4 Les États membres mettent en vigueur les dispositions législatives, réglementaires et administratives nécessaires pour se conformer aux dispositions de la présente directive au plus tard le 1er juin 1984 et ils en informent immédiatement la Commission. Article 5 Les États membres sont destinataires de la présente directive. Fait à Bruxelles, le 20 décembre 1983. Par la Commission Poul DALSAGER Membre de la Commission (1) JO no L 170 du 3. 8. 1970, p. 2. (2) JO no L 279 du 20. 12. 1971, p. 7. (3) JO no L 123 du 29. 5. 1972, p. 6. (4) JO no L 206 du 29. 7. 1978, p. 43. ANNEXE I « 4. DOSAGE DES MATIÈRES GRASSES BRUTES 1. Objet et domaine d'application La méthode permet de déterminer la teneur en matières grasses brutes des aliments des animaux. Elle ne concerne pas l'analyse des graines et fruits oléagineux définis dans le règlement no 136/66/CEE du Conseil du 22 septembre 1966. Selon la nature de l'aliment, l'un ou l'autre des procédés décrits ci-après doit être appliqué. 1.1. Procédé A Applicable aux aliments simples d'origine végétale, à l'exception de ceux qui sont connus comme contenant des matières grasses qui ne sont pas complètement extractibles par l'éther de pétrole sans hydrolyse préalable. Appartiennent à ces exceptions les glutens, les levures, les protéines de soja et de pommes de terre. Ce procédé est également applicable aux aliments composés, à l'exception de ceux qui contiennent de la poudre de lait ou dont les matières grasses ne sont pas complètement extractibles par l'éther de pétrole sans hydrolyse préalable. 1.2. Procédé B Applicable aux aliments simples d'origine animale ainsi qu'aux aliments mentionnés sous le point 1.1 comme exceptions à l'application du procédé A. 2. Principe 2.1. Procédé A L'échantillon est extrait par de l'éther de pétrole. Le solvant est distillé et le résidu est séché et pesé. 2.2. Procédé B L'échantillon est traité à chaud par de l'acide chlorhydrique. Le mélange est refroidi et filtré. Après avoir été lavé et séché, le résidu est soumis à l'analyse selon le procédé A. 3. Réactifs 3.1. Éther de pétrole, intervalle d'ébullition: 40 à 60 °C. L'indice de brome doit être inférieur à 1 et le résidu d'évaporation inférieur à 2 mg/100 ml. 3.2. Sulfate de sodium, anhydre. 3.3. Acide chlorhydrique 3 N. 3.4. Adjuvant de filtration, par exemple terre de diatomée, Hyflo-supercel. 4. Appareillage 4.1. Extracteur. Si l'appareil est muni d'un siphon (appareil de Soxhlet), le débit du reflux doit être réglé de façon à obtenir 10 cycles au moins par heure. S'il s'agit d'un appareil sans siphon, le débit de liquide reflué doit être de 10 ml environ par minute. 4.2. Cartouches d'extraction, exemptes de matières solubles dans l'éther de pétrole, dont la porosité est compatible avec les exigences du point 4.1. 4.3. Étuve à dessication, soit par le vide à 75 °C ± 3 °C, soit à pression atmosphérique à 100 °C ± 3 °C. 5. Mode opératoire 5.1. Procédé A (voir observation 8.1) Peser, à 1 mg près, 5 g de l'échantillon, les introduire dans une cartouche à extraction (4.2) et les recouvrir d'un tampon de coton dégraissé. Placer la cartouche dans un extracteur (4.1) et extraire durant six heures par de l'éther de pétrole (3.1). Recueillir l'extrait dans un ballon sec, muni de quelques fragments de pierre ponce (1) et taré. Éliminer le solvant par distillation. Sécher le résidu en plaçant le ballon pendant une heure et demie dans une étuve à dessication (4.3). Laisser refroidir dans un dessicateur et peser. Sécher à nouveau pendant trente minutes pour s'assurer que le poids de la matière grasse reste constant (la perte de poids entre deux pesées successives doit être inférieure à 1 mg). 5.2. Procédé B Peser, à 1 mg près, 2,5 g de l'échantillon (voir observation 8.2), les introduire dans un cylindre de 400 ml ou une fiole conique de 300 ml et ajouter 100 ml d'acide chlorhydrique 3 N (33) et quelques fragments de pierre ponce. Recouvrir le cylindre d'un verre de montre ou munir la fiole conique d'un réfrigérant à reflux. Amener le mélange à ébullition douce, à l'aide d'une petite flamme ou d'une plaque chauffante, et l'y maintenir durant une heure. Éviter que le produit adhère aux parois du récipient. Refroidir et ajouter une quantité d'adjuvant de filtration (3.4) suffisante pour éviter toute perte de matière grasse lors de la filtration. Filtrer sur un double papier filtre mouillé, exempt de matières grasses. Laver le résidu à l'eau froide jusqu'à neutralité du filtrat. Vérifier que le filtrat ne contient pas de matières grasses. La présence de celles-ci indique qu'une extraction de l'échantillon par l'éther de pétrole, selon le procédé A, doit être effectuée préalablement à l'hydrolyse. Placer le double papier-filtre contenant le résidu sur un verre de montre et sécher durant une heure et demie dans l'étuve à 100 °C ± 3 °C. Introduire le double papier-filtre contenant le résidu sec dans une cartouche à extraction (4.2) et le recouvrir d'un tampon de coton dégraissé. Placer la cartouche dans un extracteur (4.1) et poursuivre le mode opératoire comme indiqué en 5.1, deuxième et troisième alinéas. 6. Calcul des résultats Exprimer le résultat de la pesée en parts pour cent d'échantillon. 7. Répétabilité La différence entre les résultats de deux déterminations parallèles effectuées sur un même échantillon par le même analyste ne doit pas dépasser: 0,2 %, en valeur absolue, pour les teneurs en matières grasses brutes inférieures à 5 %, 4,0 % du résultat le plus élevé pour les teneurs de 5 à 10 %, 0,4 %, en valeur absolue, pour les teneurs supérieures à 10 %. 8. Observations 8.1. Pour les produits à teneur élevée en matières grasses, difficiles à broyer ou non appropriés au prélèvement d'une prise d'essai réduite homogène, procéder comme suit. Peser, à 1 mg près, 20 g de l'échantillon et les mélanger à 10 g ou plus de sulfate de sodium anhydre (3.2). Extraire par l'éther de pétrole (3.1) comme indiqué en 5.1. Compléter l'extrait obtenu à 500 ml avec de l'éther de pétrole (3.1) et homogénéiser. Introduire 50 ml de la solution dans un petit ballon sec, muni de quelques fragments de pierre ponce (1) et taré. Éliminer le solvant par distillation, sécher et poursuivre le mode opératoire comme indiqué en 5.1 dernier alinéa. Éliminer le solvant du résidu d'extraction se trouvant dans la cartouche, broyer le résidu à la finesse de 1 mm, le placer à nouveau dans la cartouche (ne pas ajouter de sulfate de sodium) et poursuivre le mode opératoire comme indiqué en 5.1, deuxième et troisième alinéas. La teneur en matières grasses brutes en parts pour cent d'échantillon est donnée par la formule: (10 a + b) × 5 dans laquelle: a = masse, en grammes, du résidu de la première extraction (partie aliquote de l'extrait), b = masse, en grammes, du résidu de la seconde extraction. 8.2. La prise d'essai des produits pauvres en matières grasses peut être portée à 5 g. » (1) Remplacer les fragments de pierre ponce par des perles de verre lorsque la matière grasse doit faire l'objet d'examens qualitatifs ultérieurs. (1) Remplacer les fragments de pierre ponce par des perles de verre lorsque la matière grasse doit faire l'objet d'examens qualitatifs ultérieurs. ANNEXE II « 5. DOSAGE DE LA VIRGINIAMYCINE - par diffusion sur gélose - 1. Objet et domaine d'application La méthode permet de doser la virginiamycine dans les aliments et les prémélanges. La limite inférieure du dosage est de 2 mg/kg (2 ppm) (1). 2. Principe L'échantillon est soumis à une extraction par une solution méthanolique de Tween 80. L'extrait est décanté ou centrifugé, puis dilué. Son activité antibiotique est déterminée par mesure de la diffusion de la virginiamycine dans un milieu gélosé, ensemencé avec Micrococcus luteus. La diffusion se révèle par la formation de zones d'inhibition du micro-organisme. Le diamètre de ces zones est considéré comme étant directement proportionnel au logarithme de la concentration en antibiotique pour la gamme des concentrations utilisées. 3. Micro-organisme: "Micrococcus luteus" ATCC 9341 (NCTC 8340, NCIB 8553) 3.1. Entretien de la souche Ensemencer le milieu de culture (4.1), en tubes inclinés, par Micrococcus luteus. Incuber pendant vingt-quatre heures à 30 °C, conserver en réfrigérateur à 4 °C environ et renouveler l'ensemencement tous les quinze jours. 3.2. Préparation de la suspension bactérienne (a) Récolter les germes d'un tube de gélose (3.1), de préparation récente, à l'aide de 2 à 3 ml de solution de chlorure de sodium (4.3). Ensemencer avec cette suspension 250 ml du milieu de culture (4.1) dans une fiole de Roux et incuber pendant dix-huit à vingt heures à 30 °C. Récolter les germes dans 25 ml de solution de chlorure de sodium (4.3) et homogénéiser. Diluer la suspension à 1/10 à l'aide de la solution de chlorure de sodium (4.3). La transmission lumineuse de la suspension, mesurée à 650 nm sous une épaisseur de 1 cm par comparaison avec la solution de chlorure de sodium (4.3), doit être de 75 % environ. Cette suspension peut être conservée une semaine à 4 °C environ. 4. Milieux de culture et réactifs 4.1. Milieu d'entretien de la souche et de base du dosage (b) 1.2 // Peptone de viande // 6,0 g // Tryptone // 4,0 g // Extrait de levure // 3,0 g // Extrait de viande // 1,5 g // Glucose // 1,0 g // Gélose // 10,0 à 20,0 g // Eau pH 6,5 (après stérilisation) // 1 000 ml 4.2. Tampon phosphate, pH 6 1.2 // Hydrogenophosphate de potassium, K2HPO4 // 2,0 g // Dihydrogenophosphate de potassium, KH2PO4 // 8,0 g // Eau jusqu'à // 1 000 ml 4.3. Solution à 0,8 % (p/v) de chlorure de sodium: dissoudre dans l'eau 8 g de chlorure de sodium, diluer à 1 000 ml et stériliser. 4.4. Méthanol. 4.5. Mélange de tampon phosphate (4.2) et de méthanol (4.4): 80/20 (v/v). 4.6. Solution méthanolique à 0,5 % (p/v) de Tween 80: dissoudre 5 g de Tween 80 dans du méthanol (4.4) et diluer à 1 000 ml avec du méthanol. 4.7. Substance étalon: virginiamycine d'activité connue. 5. Solutions étalons Dissoudre une quantité exactement pesée de la substance étalon (4.7) dans le méthanol (4.4) et diluer avec du méthanol (4.4) pour obtenir une solution mère à 1 000 mg de virginiamycine/ml. Conservée en flacon bouché à 4 °C, cette solution est stable pendant cinq jours. Préparer à partir de cette solution et par dilutions successives à l'aide du mélange (4.5) les solutions suivantes: S8 1 mg/ml S4 0,5 mg/ml S2 0,25 mg/ml S1 0,125 mg/ml 6. Préparation de l'extrait et des solutions 6.1. Extraction 6.1.1. Produits dont la teneur en virginiamycine ne dépasse pas 100 mg/kg Peser une quantité d'échantillon de 50,0 g. Ajouter 200 ml de solution (4.6), agiter durant trente minutes, puis laisser déposer ou centrifuger. Prélever 20 ml de la solution surnageante et évaporer jusqu'à 5 ml dans un évaporateur rotatif à une température ne dépassant pas 40 °C. Diluer le résidu à l'aide du mélange (4.5) pour obtenir une concentration présumée en virginiamycine de 1 mg/ml (= U8). 6.1.2. Produits dont la teneur en virginiamycine est supérieure à 100 mg/kg Peser une quantité d'échantillon ne dépassant pas 10,0 g et contenant de 1 à 50 mg de virginiamycine. Ajouter 100 ml de solution (4.6), agiter durant trente minutes, puis laisser déposer ou centrifuger. Diluer la solution surnageante à l'aide du mélange (4.5) pour obtenir une concentration en virginiamycine de 1 mg/ml (= U8). 6.2. Solutions de l'extrait Préparer à partir de la solution U8 et par dilutions successives (1 + 1) à l'aide du mélange (4.5) les solutions U4 (concentration présumée: 0,5 mg/ml), U2 (concentration présumée: 0,25 mg/ml) et U1 (concentration présumée: 0,125 m g/ml.) 7. Modalités du dosage 7.1. Inoculation du milieu de culture Ensemencer à 50 °C environ le milieu de base du dosage (4.1) par la suspension bactérienne (3.2). Par des essais préliminaires sur plaques avec le milieu (4.1), déterminer la quantité de suspension bactérienne permettant d'obtenir pour les différentes concentrations en virginiamycine des zones d'inhibition aussi étendues que possible et qui soient encore nettes. 7.2. Préparation des boîtes La diffusion sur gélose s'effectue dans des boîtes avec les quatre concentrations de la solution étalon (S8, S4, S2, S1) et les quatre concentrations de l'extrait (U8, U4, U2, U1). Chaque boîte doit nécessairement recevoir les quatre concentrations de l'étalon et de l'extrait. À cet effet, choisir la dimension des boîtes de telle sorte qu'on puisse creuser dans le milieu gélosé au moins huit cavités de 10 à 13 mm de diamètre, dont les centres ne sont pas distants de moins de 30 mm. On peut utiliser comme boîtes des plaques de verre planes, surmontées d'un anneau d'aluminium ou de matière plastique de 200 mm de diamètre et 20 mm de hauteur. Introduire dans les boîtes une quantité du milieu (4.1), ensemencé comme indiqué en 7.1, permettant d'obtenir une couche de 2 mm environ d'épaisseur (60 ml pour une boîte de 200 mm de diamètre). Laisser solidifier, creuser les cavités et y déposer des volumes exactement mesurés des solutions de l'étalon et de l'extrait (0,10 à 0,15 ml par cavité, selon le diamètre). Faire au moins quatre répétitions de chaque concentration de façon que chaque détermination fasse l'objet d'une évaluation de 32 zones d'inhibition. 7.3. Incubation Incuber les boîtes pendant seize à dix-huit heures à 30 °C ± 2 °C. 8. Évaluation Mesurer le diamètre des zones d'inhibition à 0,1 mm près. Pour chaque concentration, enregistrer les mesures moyennes sur papier semi-logarithmique en portant le logarithme des concentrations en regard des diamètres des zones d'inhibition. Tracer les droites les mieux ajustées pour la solution étalon et pour l'extrait en procédant, par exemple, comme suit: Déterminer le point le plus approprié du niveau le plus bas de la solution étalon (SL) à l'aide de la formule: 1.2 // (a) SL = // 7s1 + 4s2 + s4 - 2s8 10 Déterminer le point le plus approprié du niveau le plus élevé de la solution-étalon (SH) à l'aide de la formule: 1.2 // (b) SH = // 7s8 + 4s4 + s2 - 2s1 10 Déterminer de la même façon les points les plus appropriés de l'extrait pour le niveau le plus bas (UL) et le niveau le plus élevé (UH) en remplaçant S1, S2, S4 et S8 dans les formules susmentionnées par U1, U2, U4 et U8. Inscrire les valeurs SL et SH sur le même graphique. En joignant les deux points on obtient la droite la mieux ajustée pour la solution étalon. En procédant de la même façon pour UL et UH on obtient la droite la mieux ajustée pour l'extrait. En l'absence de toute interférence, les droites devraient être parallèles. En pratique, on les considère comme étant parallèles lorsque (SH - SL) et (UH - UL) ne diffèrent pas de plus de 10 % de leur moyenne. Si les droites ne sont pas parallèles, on peut éliminer soit U1 et S1, soit U8 et S8. Les valeurs SL, SH, UL et UH permettant d'obtenir les droites les mieux ajustées sont alors calculées à l'aide des formules suivantes: 1.2.3.4 // (a' ) SL = // 5s1 + 2s2 - s4 6 // ou // 5s2 + 2s4 - s8 6 // (b' ) SH = // 5s4 + 2s2 - s1 6 // ou // 5s8 + 2s4 - s2 6 et de formules analogues pour UL et UH. L'utilisation de cette alternative impose que les mêmes critères de parallélisme soient respectés. L'obtention d'un résultat provenant de trois niveaux doit être mentionnée sur le bulletin d'analyse. Lorsque les droites sont considérées comme étant parallèles, calculer le logarithme de l'activité relative (log. A) par l'une des formules ci-après, selon le nombre de niveaux (4 ou 3) utilisés pour l'évaluation du parallélisme. Pour 4 niveaux: 1.2 // (c) log. A = // (u1 + u2 + u4 + u8 - s1 - s2 - s4 - s8) × 0,602 u4 + u8 + s4 + s8 - u1 - u2 - s1 - s2 Pour 3 niveaux: 1.2 // (d) log. A = // (u1 + u2 + u4 - s1 - s2 - s4) × 0,401 u4 + s4 - u1 - s1 // ou // // (d' ) log. A = // (u2 + u4 + u8 - s2 - s4 - s8) × 0,401 u8 + s8 - u2 - s2 Activité de l'extrait de l'échantillon = activité de l'étalon correspondant × A: (U8 = S8 × A) Si l'activité relative se trouve en dehors de la gamme des valeurs comprises entre 0,5 et 2,0, répéter la détermination en procédant à des ajustements appropriés des concentrations de l'extrait ou, éventuellement, des solutions étalons. Lorsque cette activité ne peut être ramenée dans la gamme des valeurs requises, le résultat doit être considéré comme approximatif et cette indication doit être notée sur le bulletin d'analyse. Lorsque les droites sont considérées comme n'étant pas parallèles, répéter la détermination. Si le parallélisme n'est toujours pas atteint, la détermination doit être considérée comme non satisfaisante. Exprimer le résultat en milligrammes de virginiamycine par kilogramme d'aliment. 9. Répétabilité La différence entre les résultats de deux déterminations effectuées sur le même échantillon par le même analyste ne doit pas dépasser: 2 mg/kg, en valeur absolue, pour les teneurs en virginiamycine inférieures à 10 mg/kg, 20 % du résultat le plus élevé pour les teneurs de 10 à 25 mg/kg, 5 mg/kg, en valeur absolue, pour les teneurs de 25 à 50 mg/kg, 10 % du résultat le plus élevé pour les teneurs supérieures à 50 mg/kg. » (1) 1 mg de virginiamycine équivaut à 1 000 unités "UK". (a) D'autres méthodes peuvent être utilisées dans la mesure où il est prouvé qu'elles produisent des suspensions bactériennes analogues. (b) Tout milieu de culture commercial de composition analogue et donnant les mêmes résultats peut être utilisé. ANNEXE III « 1. DOSAGE DE LA BACITRACINE-ZINC - par diffusion sur gélose - 1. Objet et domaine d'application La méthode permet de doser la bacitracine-zinc dans les aliments et les prémélanges. La limite inférieure du dosage est de 5 mg/kg (5 ppm) (1). 2. Principe L'échantillon est extrait à pH 2 par un mélange de méthanol, d'eau et d'acide chlorhydrique et une solution de sulfure de sodium. Le sulfure de sodium permet de précipiter les sels de cuivre solubles pouvant interférer dans la détermination. L'extrait amené à pH 6,5 est concentré (si nécessaire) et dilué. Son activité antibiotique est déterminée par mesure de la diffusion de la bacitracine-zinc dans un milieu gélosé, ensemencé avec Micrococcus luteus (flavus). La diffusion se révèle par la formation de zones d'inhibition du micro-organisme. Le diamètre de ces zones est considéré comme étant directement proportionnel au logarithme de la concentration en antibiotique pour la gamme des concentrations utilisées. 3. Micro-organisme: "Micrococcus luteus (flavus)" ATCC 10240 3.1. Entretien de la souche Ensemencer le milieu de culture (4.1), en tubes inclinés, par Micrococcus luteus (flavus). Incuber pendant vingt-quatre heures à 30 °C, conserver en réfrigérateur à 4 °C environ et renouveler l'ensemencement tous les quinze jours. 3.2. Préparation de la suspension bactérienne (a) Récolter les germes d'un tube de gélose (3.1), de préparation récente, à l'aide de 2 à 3 ml de solution de chlorure de sodium (4.3). Ensemencer avec cette suspension 250 ml du milieu de culture (4.1) dans une fiole de Roux et incuber pendant dix-huit à vingt heures à 30 °C. Récolter les germes dans 25 ml de solution de chlorure de sodium (4.3) et homogénéiser. Diluer la suspension à 1/10 à l'aide de la solution de chlorure de sodium (4.3). La transmission lumineuse de la suspension, mesurée à 650 nm sous une épaisseur de 1 cm par comparaison avec la solution de chlorure de sodium (4.3), doit être de 75 % environ. Cette suspension peut être conservée une semaine à 4 °C environ. 4. Milieux de culture et réactifs 4.1. Milieu d'entretien de la souche (b) 1.2.3 // Peptone de viande // 6,0 // g // Tryptone // 4,0 // g // Extrait de levure // 3,0 // g // Extrait de viande // 1,5 // g // Glucose // 1,0 // g // Gélose // 10,0 à 20,0 // g // Eau // 1 000 // ml // pH 6,5-6,6 (après stérilisation) // // 4.2. Milieu de base du dosage (b) 1.2.3 // Tryptone // 10,0 // g // Extrait de levure // 3,0 // g // Extrait de viande // 1,5 // g // Glucose // 1,0 // g // Gélose // 10,0 à 20,0 // g // Tween 80 // 1 // ml // Eau // 1 000 // ml // pH 6,5 (après stérilisation) // // 4.3. Solution à 0,8 % (p/v) de chlorure de sodium: dissoudre dans l'eau 8 g de chlorure de sodium, diluer à 1 000 ml et stériliser. 4.4. Mélange de méthanol/eau/acide chlorhydrique (4.6): 80/17,5/2,5 (v/v/v). 4.5. Tampon phosphate, pH 6,5 1.2 // Phosphate bipotassique K2HPO4 // 22,15 g // Phosphate monopotassique KH2PO4 // 27,85 g // Eau jusqu'à // 1 000 ml 4.6. Acide chlorhydrique, d: 1,18-1,19 4.7. Acide chlorhydrique, 0,1 M 4.8. Solution 1 M d'hydroxyde de sodium 4.9. Solution 0,5 M environ de sulfure de sodium 4.10. Solution à 0,04 % (p/v) de pourpre de bromocrésol: dissoudre 0,1 g de pourpre de bromocrésol dans 18,5 ml de solution 0,01 M d'hydroxyde de sodium. Compléter à 250 ml avec de l'eau et homogénéiser. 4.11. Substance étalon: bacitracine-zinc d'activité connue (en UI). 5. Solutions étalons Peser une quantité de substance étalon (4.11) correspondant à 1 050 UI (selon le titre indiqué). Ajouter 5 ml d'acide chlorhydrique 0,1 M (4.7) et laisser reposer quinze minutes. Ajouter 30 ml d'eau, ajuster le pH à 4,5 à l'aide du tampon phosphate (4.5) (4 ml environ), compléter à 50 ml avec de l'eau et homogénéiser (1 ml = 21 UI). Préparer à partir de cette solution et par dilutions successives à l'aide du tampon phosphate pH 6,5 (4.5) les solutions suivantes: S8 0,42 UI/ml S4 0,21 UI/ml S2 0,105 UI/ml S1 0,0525 UI/ml 6. Préparation de l'extrait 6.1. Extraction 6.1.1. Prémélanges et aliments minéraux Peser une quantité d'échantillon de 2,0 à 5,0 g, ajouter 29,0 ml du mélange (4.4) et 1,0 ml de solution de sulfure de sodium (4.9); agiter brièvement. Vérifier que le pH est de 2 environ. Agiter durant dix minutes, ajouter 30 ml de tampon phosphate (4.5), agiter durant quinze minutes et centrifuger. Prélever une partie aliquote de la solution surnageante et amener le pH à 6,5 à l'aide de la solution 1 M d'hydroxyde de sodium (4.8) en utilisant un pH-mètre ou la solution de pourpre de bromocrésol (4.10) comme indicateur. Diluer à l'aide du tampon phosphate (4.5) pour obtenir une concentration présumée en bacitracine-zinc de 0,42 UI/ml (= U8). 6.1.2. Concentrés protéiniques Peser une quantité d'échantillon de 10,0 g, ajouter 49,0 ml du mélange (4.4) et 1,0 ml de la solution de sulfure de sodium (4.9); agiter brièvement. Vérifier que le pH est de 2 environ. Agiter durant dix minutes, ajouter 50 ml du tampon phosphate (4.5), agiter durant quinze minutes et centrifuger. Prélever une partie aliquote de la solution surnageante et amener le pH à 6,5 à l'aide de la solution 1 M d'hydroxyde de sodium (4.8) en utilisant un pH-mètre ou la solution de pourpre de bromocrésol (4.10) comme indicateur. Évaporer approximativement la moitié du volume dans un évaporateur rotatif à une température ne dépassant pas 35 °C. Diluer à l'aide du tampon phosphate (4.5) pour obtenir une concentration présumée en bacitracine-zinc de 0,42 UI/ml (= U8). 6.1.3. Autres aliments Peser une quantité d'échantillon de 10,0 g (20,0 g pour une concentration présumée en bacitracine-zinc zinc de 5 mg/kg). Ajouter 24,0 ml du mélange (4.4) et 1,0 ml de la solution de sulfure de sodium (4.9); homogénéiser durant dix minutes. Ajouter 25 ml de tampon phosphate (4.5), agiter durant quinze minutes et centrifuger. Prélever 20 ml de la solution surnageante et ajuster le pH à 6,5 à l'aide de la solution 1 M d'hydroxyde de sodium (4.8) en utilisant un pH-mètre ou la solution de pourpre de bromocrésol (4.10) comme indicateur. Évaporer jusqu'à 4 ml environ dans un évaporateur rotatif à une température ne dépassant pas 35 °C. Diluer le résidu à l'aide du tampon phosphate (4.5) pour obtenir une concentration présumée en bacitracine-zinc de 0,42 UI/ml (= U8). 6.2. Solutions de l'extrait Préparer à partir de la solution U8 et par dilutions successives (1 + 1) à l'aide du tampon phosphate (4.5), les solutions U4 (concentration présumée: 0,21 UI/ml), U2 (concentration présumée: 0,105 UI/ml) et U1 (concentration présumée: 0,0525 UI/ml). 7. Modalités du dosage 7.1. Inoculation du milieu de culture Ensemencer à 50 °C environ le milieu de base du dosage (4.2) par la suspension bactérienne (3.2). Par des essais préliminaires sur plaques avec le milieu (4.2), déterminer la quantité de suspension bactérienne permettant d'obtenir pour les différentes concentrations en bacitracine-zinc des zones d'inhibition aussi étendues que possible et qui soient encore nettes. 7.2. Préparation des boîtes La diffusion sur gélose s'effectue dans des boîtes avec les quatre concentrations de la solution étalon (S8, S4, S2, S1) et les quatre concentrations de l'extrait (U8, U4, U2, U1).Chaque boîte doit nécessairement recevoir les quatre concentrations de l'étalon et de l'extrait. À cet effet, choisir la dimension des boîtes de telle sorte qu'on puisse creuser dans le milieu gélosé au moins huit cavités de 10 à 13 mm de diamètre, dont les centres ne sont pas distants de moins de 30 mm. On peut utiliser comme boîtes des plaques de verre planes, surmontées d'un anneau d'aluminium ou de matière plastique de 200 mm de diamètre et 20 mm de hauteur. Introduire dans les boîtes une quantité du milieu (4.2), ensemencé comme indiqué en 7.1, permettant d'obtenir une couche de 2 mm environ d'épaisseur (60 ml pour une boîte de 200 mm de diamètre). Laisser solidifier, creuser les cavités et y déposer des volumes exactement mesurés des solutions de l'étalon et de l'extrait (0,10 à 0,15 ml par cavité, selon le diamètre). Faire au moins quatre répétitions de chaque concentration de façon que chaque détermination fasse l'objet d'une évaluation de 32 zones d'inhibition. 7.3. Incubation Incuber les boîtes pendant seize à dix-huit heures à 30 °C ± 2 °C. 8. Évaluation Mesurer le diamètre des zones d'inhibition à 0,1 mm près. Pour chaque concentration, enregistrer les mesures moyennes sur papier semi-logarithmique en portant le logarithme des concentrations en regard des diamètres des zones d'inhibition. Tracer les droites les mieux ajustées pour la solution étalon et pour l'extrait en procédant, par exemple, comme suit: Déterminer le point le plus approprié du niveau le plus bas de la solution étalon (SL) à l'aide de la formule: 1.2 // (a) SL = // 7s1 + 4s2 + s4 - 2s8 10 Déterminer le point le plus approprié du niveau le plus élevé de la solution étalon (SH) à l'aide de la formule: 1.2 // (b) SH = // 7s8 + 4s4 + s2 - 2s1 10 Déterminer de la même façon les points les plus appropriés de l'extrait pour le niveau le plus bas (UL) et le niveau le plus élevé (UH) en remplaçant S1, S2, S4 et S8 dans les formules susmentionnées par U1, U2, U4 et U8. Inscrire les valeurs SL et SH sur le même graphique. En joignant les deux points on obtient la droite la mieux ajustée pour la solution étalon. En procédant de la même façon pour UL et UH on obtient la droite la mieux ajustée pour l'extrait. En l'absence de toute interférence, les droites devraient être parallèles. En pratique, on les considère comme étant parallèles lorsque (SH - SL) et (UH - UL) ne diffèrent par de plus de 10 % de leur moyenne. Si les droites ne sont pas parallèles, on peut éliminer soit U1 et S1, soit U8 et S8. Les valeurs SL, SH, UL et UH permettant d'obtenir les droites les mieux ajustées sont alors calculées à l'aide des formules suivantes: 1.2.3.4 // (a' ) SL = // 5s1 + 2s2 - s4 6 // ou // 5s2 + 2s4 - s8 6 // (b' ) SH = // 5s4 + 2s2 - s1 6 // ou // 5s8 + 2s4 - s2 6 et de formules analogues pour UL et UH. L'utilisation de cette alternative impose que les mêmes critères de parallélisme soient respectés. L'obtention d'un résultat provenant de trois niveaux doit être mentionnée sur le bulletin d'analyse. Lorsque les droites sont considérées comme étant parallèles, calculer le logarithme de l'activité relative (log. A) par l'une des formules ci-après, selon le nombre de niveaux (4 ou 3) utilisés pour l'évaluation du parallélisme. Pour 4 niveaux: 1.2 // (c) log. A = // (u1 + u2 + u4 + u8 - s1 - s2 - s4 - s8) × 0,602 u4 + u8 + s4 + s8 - u1 - u2 - s1 - s2 Pour 3 niveaux: 1.2 // (d) log. A = // (u1 + u2 + u4 - s1 - s2 - s4) × 0,401 u4 + s4 - u1 - s1 // ou // // (d' ) log. A = // (u2 + u4 + u8 - s2 - s4 - s8) × 0,401 u8 + s8 - u2 - s2 Activité de l'extrait de l'échantillon = activité de l'étalon correspondant × A: (U8 = S8 × A) Si l'activité relative se trouve en dehors de la gamme des valeurs comprises entre 0,5 et 2,0, répéter la détermination en procédant à des ajustements appropriés des concentrations de l'extrait ou, éventuellement, des solutions étalons. Lorsque cette activité ne peut être ramenée dans la gamme des valeurs requises, le résultat doit être considéré comme approximatif et cette indication doit être notée sur le bulletin d'analyse. Lorsque les droites sont considérées comme n'étant pas parallèles, répéter la détermination. Si le parallélisme n'est toujours pas atteint, la détermination doit être considérée comme non satisfaisante. Exprimer le résultat en milligrammes de bacitracine-zinc par kilogramme d'aliment. 9. Répétabilité La différence entre les résultats de deux déterminations parallèles effectuées sur le même échantillon par le même analyste ne doit pas dépasser: 2 mg/kg, en valeur absolue, pour les teneurs en bacitracine-zinc inférieures à 10 mg/kg, 20 % du résultat le plus élevé pour les teneurs de 10 à 25 mg/kg, 5 mg/kg, en valeur absolue, pour les teneurs de 25 à 50 mg/kg, 10 % du résultat le plus élevé pour les teneurs supérieures à 50 mg/kg. » (1) 1 mg de bacitracine-zinc (qualité pour aliments des animaux) équivaut à 42 unités internationales (UI). (a) D'autres méthodes peuvent être utilisées dans la mesure où il est prouvé qu'elles produisent des suspensions bactériennes analogues. (b) Tout milieu de culture commercial de composition analogue et donnant les mêmes résultats peut être utilisé. PH 6,5 ( APRES STERILISATION ) // // 4.3 . SOLUTION A 0,8 % ( P/V ) DE CHLORURE DE SODIUM : DISSOUDRE DANS L'EAU 8 G DE CHLORURE DE SODIUM, DILUER A 1 000 ML ET STERILISER . 4.4 . MELANGE DE METHANOL/EAU/ACIDE CHLORHYDRIQUE ( 4.6 ): 80/17,5/2,5 ( V/V/V ). 4.5 . TAMPON PHOSPHATE, PH 6,5 1.2PHOSPHATE BIPOTASSIQUE K2HPO4 22,15 G PHOSPHATE MONOPOTASSIQUE KH2PO4 27,85 G EAU JUSQU'A 1 000 ML 4.6 . ACIDE CHLORHYDRIQUE, D : 1,18-1,19 4.7 . ACIDE CHLORHYDRIQUE, 0,1 M 4.8 . SOLUTION 1 M D'HYDROXYDE DE SODIUM 4.9 . SOLUTION 0,5 M ENVIRON DE SULFURE DE SODIUM 4.10 . SOLUTION A 0,04 % ( P/V ) DE POURPRE DE BROMOCRESOL : DISSOUDRE 0,1 G DE POURPRE DE BROMOCRESOL DANS 18,5 ML DE SOLUTION 0,01 M D'HYDROXYDE DE SODIUM . COMPLETER A 250 ML AVEC DE L'EAU ET HOMOGENEISER . 4.11 . SUBSTANCE ETALON : BACITRACINE-ZINC D'ACTIVITE CONNUE ( EN UI ). 5 . SOLUTIONS ETALONS PESER UNE QUANTITE DE SUBSTANCE ETALON ( 4.11 ) CORRESPONDANT A 1 050 UI ( SELON LE TITRE INDIQUE ). AJOUTER 5 ML D'ACIDE CHLORHYDRIQUE 0,1 M ( 4.7 ) ET LAISSER REPOSER QUINZE MINUTES . AJOUTER 30 ML D'EAU, AJUSTER LE PH A 4,5 A L'AIDE DU TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ) ( 4 ML ENVIRON ), COMPLETER A 50 ML AVEC DE L'EAU ET HOMOGENEISER ( 1 ML = 21 UI ). PREPARER A PARTIR DE CETTE SOLUTION ET PAR DILUTIONS SUCCESSIVES A L'AIDE DU TAMPON PHOSPHATE PH 6,5 ( 4.5 ) LES SOLUTIONS SUIVANTES : S8 0,42 UI/ML S4 0,21 UI/ML S2 0,105 UI/ML S1 0,0525 UI/ML 6 . PREPARATION DE L'EXTRAIT 6.1 . EXTRACTION 6.1.1 . PREMELANGES ET ALIMENTS MINERAUX PESER UNE QUANTITE D'ECHANTILLON DE 2,0 A 5,0 G, AJOUTER 29,0 ML DU MELANGE ( 4.4 ) ET 1,0 ML DE SOLUTION DE SULFURE DE SODIUM ( 4.9 ); AGITER BRIEVEMENT . VERIFIER QUE LE PH EST DE 2 ENVIRON . AGITER DURANT DIX MINUTES, AJOUTER 30 ML DE TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ), AGITER DURANT QUINZE MINUTES ET CENTRIFUGER . PRELEVER UNE PARTIE ALIQUOTE DE LA SOLUTION SURNAGEANTE ET AMENER LE PH A 6,5 A L'AIDE DE LA SOLUTION 1 M D'HYDROXYDE DE SODIUM ( 4.8 ) EN UTILISANT UN PH-METRE OU LA SOLUTION DE POURPRE DE BROMOCRESOL ( 4.10 ) COMME INDICATEUR . DILUER A L'AIDE DU TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ) POUR OBTENIR UNE CONCENTRATION PRESUMEE EN BACITRACINE-ZINC DE 0,42 UI/ML (= U8 ). 6.1.2 . CONCENTRES PROTEINIQUES PESER UNE QUANTITE D'ECHANTILLON DE 10,0 G, AJOUTER 49,0 ML DU MELANGE ( 4.4 ) ET 1,0 ML DE LA SOLUTION DE SULFURE DE SODIUM ( 4.9 ); AGITER BRIEVEMENT . VERIFIER QUE LE PH EST DE 2 ENVIRON . AGITER DURANT DIX MINUTES, AJOUTER 50 ML DU TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ), AGITER DURANT QUINZE MINUTES ET CENTRIFUGER . PRELEVER UNE PARTIE ALIQUOTE DE LA SOLUTION SURNAGEANTE ET AMENER LE PH A 6,5 A L'AIDE DE LA SOLUTION 1 M D'HYDROXYDE DE SODIUM ( 4.8 ) EN UTILISANT UN PH-METRE OU LA SOLUTION DE POURPRE DE BROMOCRESOL ( 4.10 ) COMME INDICATEUR . EVAPORER APPROXIMATIVEMENT LA MOITIE DU VOLUME DANS UN EVAPORATEUR ROTATIF A UNE TEMPERATURE NE DEPASSANT PAS 35 C . DILUER A L'AIDE DU TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ) POUR OBTENIR UNE CONCENTRATION PRESUMEE EN BACITRACINE-ZINC DE 0,42 UI/ML (= U8 ). 6.1.3 . AUTRES ALIMENTS PESER UNE QUANTITE D'ECHANTILLON DE 10,0 G ( 20,0 G POUR UNE CONCENTRATION PRESUMEE EN BACITRACINE-ZINC ZINC DE 5 MG/KG ). AJOUTER 24,0 ML DU MELANGE ( 4.4 ) ET 1,0 ML DE LA SOLUTION DE SULFURE DE SODIUM ( 4.9 ); HOMOGENEISER DURANT DIX MINUTES . AJOUTER 25 ML DE TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ), AGITER DURANT QUINZE MINUTES ET CENTRIFUGER . PRELEVER 20 ML DE LA SOLUTION SURNAGEANTE ET AJUSTER LE PH A 6,5 A L'AIDE DE LA SOLUTION 1 M D'HYDROXYDE DE SODIUM ( 4.8 ) EN UTILISANT UN PH-METRE OU LA SOLUTION DE POURPRE DE BROMOCRESOL ( 4.10 ) COMME INDICATEUR . EVAPORER JUSQU'A 4 ML ENVIRON DANS UN EVAPORATEUR ROTATIF A UNE TEMPERATURE NE DEPASSANT PAS 35 C . DILUER LE RESIDU A L'AIDE DU TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ) POUR OBTENIR UNE CONCENTRATION PRESUMEE EN BACITRACINE-ZINC DE 0,42 UI/ML (= U8 ). 6.2 . SOLUTIONS DE L'EXTRAIT PREPARER A PARTIR DE LA SOLUTION U8 ET PAR DILUTIONS SUCCESSIVES ( 1 + 1 ) A L'AIDE DU TAMPON PHOSPHATE ( 4.5 ), LES SOLUTIONS U4 ( CONCENTRATION PRESUMEE : 0,21 UI/ML ), U2 ( CONCENTRATION PRESUMEE : 0,105 UI/ML ) ET U1 ( CONCENTRATION PRESUMEE : 0,0525 UI/ML ). 7 . MODALITES DU DOSAGE 7.1 . INOCULATION DU MILIEU DE CULTURE ENSEMENCER A 50 C ENVIRON LE MILIEU DE BASE DU DOSAGE ( 4.2 ) PAR LA SUSPENSION BACTERIENNE ( 3.2 ). PAR DES ESSAIS PRELIMINAIRES SUR PLAQUES AVEC LE MILIEU ( 4.2 ), DETERMINER LA QUANTITE DE SUSPENSION BACTERIENNE PERMETTANT D'OBTENIR POUR LES DIFFERENTES CONCENTRATIONS EN BACITRACINE-ZINC DES ZONES D'INHIBITION AUSSI ETENDUES QUE POSSIBLE ET QUI SOIENT ENCORE NETTES . 7.2 . PREPARATION DES BOITES LA DIFFUSION SUR GELOSE S'EFFECTUE DANS DES BOITES AVEC LES QUATRE CONCENTRATIONS DE LA SOLUTION ETALON ( S8, S4, S2, S1 ) ET LES QUATRE CONCENTRATIONS DE L'EXTRAIT ( U8, U4, U2, U1).CHAQUE BOITE DOIT NECESSAIREMENT RECEVOIR LES QUATRE CONCENTRATIONS DE L'ETALON ET DE L'EXTRAIT . A CET EFFET, CHOISIR LA DIMENSION DES BOITES DE TELLE SORTE QU'ON PUISSE CREUSER DANS LE MILIEU GELOSE AU MOINS HUIT CAVITES DE 10 A 13 MM DE DIAMETRE, DONT LES CENTRES NE SONT PAS DISTANTS DE MOINS DE 30 MM . ON PEUT UTILISER COMME BOITES DES PLAQUES DE VERRE PLANES, SURMONTEES D'UN ANNEAU D'ALUMINIUM OU DE MATIERE PLASTIQUE DE 200 MM DE DIAMETRE ET 20 MM DE HAUTEUR . INTRODUIRE DANS LES BOITES UNE QUANTITE DU MILIEU ( 4.2 ), ENSEMENCE COMME INDIQUE EN 7.1, PERMETTANT D'OBTENIR UNE COUCHE DE 2 MM ENVIRON D'EPAISSEUR ( 60 ML POUR UNE BOITE DE 200 MM DE DIAMETRE ). LAISSER SOLIDIFIER, CREUSER LES CAVITES ET Y DEPOSER DES VOLUMES EXACTEMENT MESURES DES SOLUTIONS DE L'ETALON ET DE L'EXTRAIT ( 0,10 A 0,15 ML PAR CAVITE, SELON LE DIAMETRE ). FAIRE AU MOINS QUATRE REPETITIONS DE CHAQUE CONCENTRATION DE FACON QUE CHAQUE DETERMINATION FASSE L'OBJET D'UNE EVALUATION DE 32 ZONES D'INHIBITION . 7.3 . INCUBATION INCUBER LES BOITES PENDANT SEIZE A DIX-HUIT HEURES A 30 C 2 C . 8 . EVALUATION MESURER LE DIAMETRE DES ZONES D'INHIBITION A 0,1 MM PRES . POUR CHAQUE CONCENTRATION, ENREGISTRER LES MESURES MOYENNES SUR PAPIER SEMI-LOGARITHMIQUE EN PORTANT LE LOGARITHME DES CONCENTRATIONS EN REGARD DES DIAMETRES DES ZONES D'INHIBITION . TRACER LES DROITES LES MIEUX AJUSTEES POUR LA SOLUTION ETALON ET POUR L'EXTRAIT EN PROCEDANT, PAR EXEMPLE, COMME SUIT : DETERMINER LE POINT LE PLUS APPROPRIE DU NIVEAU LE PLUS BAS DE LA SOLUTION ETALON ( SL ) A L'AIDE DE LA FORMULE : 1.2(A ) SL = 7S1 + 4S2 + S4 - 2S8 10 DETERMINER LE POINT LE PLUS APPROPRIE DU NIVEAU LE PLUS ELEVE DE LA SOLUTION ETALON ( SH ) A L'AIDE DE LA FORMULE : 1.2(B ) SH = 7S8 + 4S4 + S2 - 2S1 10 DETERMINER DE LA MEME FACON LES POINTS LES PLUS APPROPRIES DE L'EXTRAIT POUR LE NIVEAU LE PLUS BAS ( UL ) ET LE NIVEAU LE PLUS ELEVE ( UH ) EN REMPLACANT S1, S2, S4 ET S8 DANS LES FORMULES SUSMENTIONNEES PAR U1, U2, U4 ET U8 . INSCRIRE LES VALEURS SL ET SH SUR LE MEME GRAPHIQUE . EN JOIGNANT LES DEUX POINTS ON OBTIENT LA DROITE LA MIEUX AJUSTEE POUR LA SOLUTION ETALON . EN PROCEDANT DE LA MEME FACON POUR UL ET UH ON OBTIENT LA DROITE LA MIEUX AJUSTEE POUR L'EXTRAIT . EN L'ABSENCE DE TOUTE INTERFERENCE, LES DROITES DEVRAIENT ETRE PARALLELES . EN PRATIQUE, ON LES CONSIDERE COMME ETANT PARALLELES LORSQUE ( SH - SL ) ET ( UH - UL ) NE DIFFERENT PAR DE PLUS DE 10 % DE LEUR MOYENNE . SI LES DROITES NE SONT PAS PARALLELES, ON PEUT ELIMINER SOIT U1 ET S1, SOIT U8 ET S8 . LES VALEURS SL, SH, UL ET UH PERMETTANT D'OBTENIR LES DROITES LES MIEUX AJUSTEES SONT ALORS CALCULEES A L'AIDE DES FORMULES SUIVANTES : 1.2.3.4(A' ) SL = 5S1 + 2S2 - S4 6 OU 5S2 + 2S4 - S8 6 ( B' ) SH = 5S4 + 2S2 - S1 6 OU 5S8 + 2S4 - S2 6 ET DE FORMULES ANALOGUES POUR UL ET UH . L'UTILISATION DE CETTE ALTERNATIVE IMPOSE QUE LES MEMES CRITERES DE PARALLELISME SOIENT RESPECTES . L'OBTENTION D'UN RESULTAT PROVENANT DE TROIS NIVEAUX DOIT ETRE MENTIONNEE SUR LE BULLETIN D'ANALYSE . LORSQUE LES DROITES SONT CONSIDEREES COMME ETANT PARALLELES, CALCULER LE LOGARITHME DE L'ACTIVITE RELATIVE ( LOG . A ) PAR L'UNE DES FORMULES CI-APRES, SELON LE NOMBRE DE NIVEAUX ( 4 OU 3 ) UTILISES POUR L'EVALUATION DU PARALLELISME . POUR 4 NIVEAUX : 1.2(C ) LOG . A = ( U1 + U2 + U4 + U8 - S1 - S2 - S4 - S8 ) 0,602 U4 + U8 + S4 + S8 - U1 - U2 - S1 - S2 POUR 3 NIVEAUX : 1.2(D ) LOG . A = ( U1 + U2 + U4 - S1 - S2 - S4 ) 0,401 U4 + S4 - U1 - S1 OU // ( D' ) LOG . A = ( U2 + U4 + U8 - S2 - S4 - S8 ) 0,401 U8 + S8 - U2 - S2 ACTIVITE DE L'EXTRAIT DE L'ECHANTILLON = ACTIVITE DE L'ETALON CORRESPONDANT A : ( U8 = S8 A ) SI L'ACTIVITE RELATIVE SE TROUVE EN DEHORS DE LA GAMME DES VALEURS COMPRISES ENTRE 0,5 ET 2,0, REPETER LA DETERMINATION EN PROCEDANT A DES AJUSTEMENTS APPROPRIES DES CONCENTRATIONS DE L'EXTRAIT OU, EVENTUELLEMENT, DES SOLUTIONS ETALONS . LORSQUE CETTE ACTIVITE NE PEUT ETRE RAMENEE DANS LA GAMME DES VALEURS REQUISES, LE RESULTAT DOIT ETRE CONSIDERE COMME APPROXIMATIF ET CETTE INDICATION DOIT ETRE NOTEE SUR LE BULLETIN D'ANALYSE . LORSQUE LES DROITES SONT CONSIDEREES COMME N'ETANT PAS PARALLELES, REPETER LA DETERMINATION . SI LE PARALLELISME N'EST TOUJOURS PAS ATTEINT, LA DETERMINATION DOIT ETRE CONSIDEREE COMME NON SATISFAISANTE . EXPRIMER LE RESULTAT EN MILLIGRAMMES DE BACITRACINE-ZINC PAR KILOGRAMME D'ALIMENT . 9 . REPETABILITE LA DIFFERENCE ENTRE LES RESULTATS DE DEUX DETERMINATIONS PARALLELES EFFECTUEES SUR LE MEME ECHANTILLON PAR LE MEME ANALYSTE NE DOIT PAS DEPASSER : 2 MG/KG, EN VALEUR ABSOLUE, POUR LES TENEURS EN BACITRACINE-ZINC INFERIEURES A 10 MG/KG, 20 % DU RESULTAT LE PLUS ELEVE POUR LES TENEURS DE 10 A 25 MG/KG, 5 MG/KG, EN VALEUR ABSOLUE, POUR LES TENEURS DE 25 A 50 MG/KG, 10 % DU RESULTAT LE PLUS ELEVE POUR LES TENEURS SUPERIEURES A 50 MG/KG . " ( 1 ) 1 MG DE BACITRACINE-ZINC ( QUALITE POUR ALIMENTS DES ANIMAUX ) EQUIVAUT A 42 UNITES INTERNATIONALES ( UI ). ( A ) D'AUTRES METHODES PEUVENT ETRE UTILISEES DANS LA MESURE OU IL EST PROUVE QU'ELLES PRODUISENT DES SUSPENSIONS BACTERIENNES ANALOGUES . ( B ) TOUT MILIEU DE CULTURE COMMERCIAL DE COMPOSITION ANALOGUE ET DONNANT LES MEMES RESULTATS PEUT ETRE UTILISE . Fin du document Document livré le: 11/03/1999

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